纤维素酶（cellulase，CL）活性测定试剂盒说明书
分光光度法 50 管/24 样
正式测定前务必取 2-3 个预期差异较大的样本做预测定测定意义：
CL（EC 3.2.1.4）存在于细菌、真菌和动物体内，能够催化纤维素降解，是一类可广泛应用于医药、食品、棉纺、环保及可再生资源利用等领域的酶制剂。
测定原理：
采用蒽酮比色法测定CL催化纤维素降解产生的还原糖的含量。
需自备的仪器和用品：
可见分光光度计、水浴锅、可调式移液器、1mL 玻璃比色皿、研钵、冰、浓硫酸和蒸馏水。
试剂的组成和配制：
提取液：液体 50mL×1 瓶，4℃保存；
试剂一：液体 6mL×1 瓶，4℃保存；
试剂二：液体 40mL×1 瓶，4℃保存；
试剂三：粉剂×1 瓶，4℃保存； 临用前加入 5mL 蒸馏水和 45mL 浓硫酸充分溶解待用。
样品测定的准备：
1、细菌或培养细胞：先收集细菌或细胞到离心管内，离心后弃上清；按照细菌或细胞数量（104 个）：提取液体积（mL）为 500~1000：1 的比例（建议 500 万细菌或细胞加入 1mL 提取液），超声波破碎细菌或细胞（冰浴，功率 20％或 200W，超声 3s，间隔 10s，重复 30 次）； 8000g 4℃离心 10min，取上清，置冰上待测。
2、组织：按照组织质量（g）：提取液体积(mL)为 1：5~10 的比例（建议称取约 0.1g 组织，加入 1mL 提取液），进行冰浴匀浆。8000g 4℃离心 10min，取上清，置冰上待测。
3、血清（浆）样品：直接检测。
测定步骤：
1、 分光光度计预热 30min 以上，调节波长至 620nm，蒸馏水调零。
2、加样表（在 EP 管中依次加入下列试剂）：
| 试剂名称 | | 对照管 | | 测定管 |
| | | | | |
| 样本 | | 100 | | 100 |
| 试剂一（μL ） | | | | 180 |
| 试剂二（μL ） | | 740 | | 740 |
| 蒸馏水（μL ） | | 360 | | 180 |
| 37℃振荡反应 1h 后，90℃水浴 15min（盖紧，防止水分散失），冷却后 | ||||
| | | 8000g 25℃离心 10min，取上清，得糖化液 | ||
| 糖化液 (μL) | 350 | | 350 | |
| 试剂三 (μL) | 650 | | 650 | |
混匀， 90℃水浴 10min（盖紧，防止水分散失），冷却，620nm 处蒸馏水调零，测定吸光值A，计算 ΔA=A 测定管-A 对照管。每个测定管设一个对照管。
CL 活力计算：
1、标准条件下测定的回归方程为 y = 5.018x - 0.0462；x 为标准品浓度（mg/mL），y 为吸光值。
2、血清（浆）CL 活力的计算
单位的定义：每 mL 血清（浆）每分钟催化产生 1μg 葡萄糖定义为一个酶活力单位。 CL 活力(μg /min/mL)= [1000×(ΔA+0.0462) ÷5.018×V 反总]÷V 样÷T =39.8×(ΔA+0.0462)
3、细胞、细菌和组织中 CL 活力的计算
（1）按照蛋白浓度计算
单位的定义：每 mg 组织蛋白每分钟催化产生 1μg 葡萄糖定义为一个酶活力单位。 CL 活力(μg /min/mg prot)=[1000×(ΔA+0.0462) ÷5.018×V 反总]÷(V 样×Cpr) ÷T
=39.8×(ΔA+0.0462) ÷Cpr
（2）按样本鲜重计算
单位的定义：每 g 组织每分钟催化产生 1μg 葡萄糖定义为一个酶活力单位。
CL 活力(μg /min /g 鲜重)=[1000×(ΔA+0.0462) ÷5.018×V 反总]÷(W× V 样÷V 样总) ÷T
=39.8×(ΔA+0.0462) ÷W
（3）按细菌或细胞密度计算
单位的定义：每 1 万个细菌或细胞每分钟催化产生 1μg 葡萄糖定义为一个酶活力单位。 CL 活力(μg /min /104 cell)=[1000×(ΔA+0.0462) ÷5.018×V 反总]÷(500×V 样÷V 样总) ÷T
=0.0796×(ΔA+0.0462)
1000：1mg/mL=1000ug/mL；V 反总：反应体系总体积，1.2mL； V 样：加入样本体积，0.1 mL；V 样总：加入提取液体积，1 mL；T：反应时间，60 min；Cpr：样本蛋白质浓度，mg/mL；W：样本质量，g；500：细菌或细胞总数，500 万。
